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tob mrna在结直肠癌组织表达的临床病理学意义

              作者:霍志斌, 王淑霞, 吴殿超, 肖琦海, 翟同善, 周总光

【关键词】  结直肠癌

   摘     要:目的:研究Tob mRNA在结直肠癌组织及其相应的癌旁正常组织的表达,探讨其在结直肠癌发生发展中的作用。方法:用荧光定量RT-PCR方法,检测38例结直肠癌标本及其相应的癌旁正常组织Tob mRNA的表达。结果:38例癌组织Tob mRNA表达高于癌旁正常组织(P<0.005); Tob mRNA表达随着Dukes分期有增高趋势,差异有统计学意义(P<0.005)。结论:在结直肠癌的发病机制中,Tob mRNA可能为致癌基因。

  关键词:     结直肠癌;     Tob mRNA

  Association of Tob mRNA Expression with Clinicopathological Characteristics of Colorectal Cancer

  Abstract: Objective: To investigate the expression of Tob mRNA in human colorectal cancer tissues, and their corresponding para-cancerous tissues , and to investigate the role of Tob mRNA in the pathogenesis of colorectal cancer. Method: Quantitative real time RT-PCR was used to detect the expression of Tob mRNA in 38 colorectal cancers. Result: Compared to those from corresponding normal tissues the expression of Tob mRNA in  colorectal cancer tissues were significantly increased. Moreover, the expression value of Tob in Dukes A,B,C,D was 8.32±1.90, 6.90±1.43, 6.01±1.25 and 3.48±0.69,respectively. Analyzed by one-way ANOVA,there were significant differences in the expression of Tob in defferent Dukes stage. Conclusion: The up-regulation expression of Tob mRNA may be closely associated with tumorigenesis of colorectal carcinoma.

  Key words:     Colorectal cancer;     Tob mRNA

  Tob基因是抗增殖基因,可抑制细胞的增殖[1],最近的研究表明:在肺癌的发病机制中Tob可能为抑癌基因[2]。但是,结直肠癌组织Tob基因的表达情况国内外未见报道。基于此,我们采用荧光定量 RT-PCR技术检测了38例结直肠癌、癌旁正常组织Tob mRNA的表达,并初步探讨其参与结直肠癌发生发展的机制。

  1     材料与方法

  1.1     材料:38例癌组织及相应的癌旁正常组织(距肿瘤10cm以上)取自我院2003年7月至2005年1月外科手术切除的大肠癌新鲜标本,均经病理证实。患者年龄35~76岁,平均56岁;男17例,女21例。根据Newland(1981)Dukes分期法, A期9例,B期17 例,C期8 例,D期4例。所有病例术前均未经过放疗和化疗。组织取材后立即放入液氮内冷冻,-70℃冰箱保存。

  1.2     试剂及仪器:Trizol试剂盒 (GIBCO,USA) ,RT-PCR 试剂盒(MBI公司), PCR 试剂盒(MBI 公司),DEPC(GIBCO,USA), dNTP(MBI 公司),GAPDH内对照试剂盒(ABI,USA),FTC2000实时荧光定量基因扩增仪(枫岭公司,加拿大)。

  1.3     引物设计:Tob基因上游引物:5’-CCAGTACAGTAATGCCTTTGATGT-3’,下游引物:5’-CCGTGCATTTTAACTTGTACGAT-3’,  探针:5’-CATTGAGGCCTCCATAGGCTGC-3’,内参照GAPDH上游引物:5’- GGCATGGACTGTGGTCATGA-3’,下游引物5’- TGGGTGTGAACCACGAGAAC-3’,探针:5’- CTGCACCACCAACTGCTTAGC-3’, 上述引物由上海生物工程技术服务公司合成。

  1.4   总RNA提取及cDNA制备:按照TRizol试剂盒说明提取结直肠癌组织、癌旁正常组织总RNA,RNA纯度为:OD260/OD280>1.8。每个总RNA样品取5μl,加1μl(0.2μg/μl)随机引物,加6μl DEPC水,混匀后瞬时离心,70℃变性5min,冰上冷却5min,加入4μl 5×逆转录缓冲液、2μl 10mmol/LdNTP混合物、1μl RNA酶抑制剂、1μl反转录酶,反应终体积为20μl,20℃反应5min、42℃反应60min、70℃反应5min,冰上冷却后置于-20℃贮存备用。

  1.5     荧光定量PCR反应:依次取10×PCR缓冲液3μl、25mmol/L MgCl2 3μl、25mmol/L dNTP 0.36μl、5’和3’引物各1μl、TaqMan探针 1μl(10μmol/L)、Taq 酶(5u/μl)0.3μl、ddH2O 18.34μl 、模板cDNA 5μl加入0.5ml EP管至终体积30μl。94℃预变性2min。然后按94℃ 20s、53℃ 30s、60℃ 60s进行45个循环的PCR反应,53℃30s收集荧光。

  1.6     定量分析:用Tob mRNA Ct 值/内参照GAPDH Ct值代表Tob mRNA的精确含量。

  1.7     统计学处理:Tob 基因表达以均数±标准差表示,用SPSS11.5统计软件统计,配对t检验及单因素方差分析,以P<0.05认为差异有统计学意义。


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  2     结     果

  2.1     根据定量荧光PCR原理Ct值与扩增片断的实际拷贝数呈反比,即Ct值越低,实际含量越高。结直肠癌组织Tob mRNA表达值为6.89±1.90高于癌旁正常组织(7.84±2.00, p<0.005) 。

  2.2     Tob mRNA表达与临床病理特征的关系:结直肠癌组织Tob mRNA表达随着Dukes分期越晚其表达有增高趋势,淋巴结转移组结直肠癌组织Tob mRNA的表达高于无淋巴结转移组癌组织,但Tob mRNA表达与患者的性别、年龄、肿瘤的分化程度无关。(表1)

  3     讨     论

  结直肠癌是我国常见的恶性肿瘤,其发生发展是一个多步骤、多阶段及多基因参与的疾病,癌基因和抑癌基因表达失衡可导致肿瘤的发生[3]。认识大肠癌分子水平的改变将有助于结直肠癌的筛选、诊断、预后的判断和基因治疗。

  Tob基因是抗增殖基因,可抑制细胞的增殖,最近的研究表明:在肺癌的发病机制中Tob可能为抑癌基因。我们用荧光定量 RT-PCR方法检测了38例结直肠癌组织及癌旁正常组织Tob mRNA表达。结果表明TobmRNA在结直肠癌组织的表达明显高于癌旁正常组织,且随着Dukes分期越晚Tob mRNA表达越高,这提示Tob mRNA高表达促进了结直肠癌的发生和浸润,其生物学功能表现为致癌基因,可能是结直肠癌的检测指标之一。Tob mRNA在结直肠癌的表达和肺癌不同,可能和同一基因在不同肿瘤组织中具有不同的生物化学功能有关,因为肿瘤的发生发展是复杂的多基因、多步骤的一系列分子事件[3]。同样的情况还见于磷脂结合蛋白AnnexinⅠ,其在乳癌、肝细胞癌为高表达而在食管癌和前列腺癌低表达[4~7]。周期素依赖激酶抑制因子p21在大部分肿瘤中是抑癌基因,但在一些肿瘤中如食管鳞状细胞癌,p21过度表达促进了肿瘤的发生发展,其生物学功能表现为致癌基因[8]。

  综上所述,Tob mRNA在大肠癌的形成过程中可能为致癌基因。但Tob基因在恶性肿瘤形成中的作用机制尚不完全清楚,有待进一步研究。

  表1     Tob mRNA表达与临床病理特征的关系(略)
      
  参考文献:

  [1]     Matsuda, S., Kawamura-Tsuzuku, J., Ohsugi, M.,et al.Tob, a novel protein that interacts with p185erbB2, is associated with anti-proliferative activity[J].Oncogene,1996,12(4):705.

  [2]     Iwanaga K, Sueoka N, Sato A,et al . Alteration of expression or phosphorylation status of tob, a novel tumor suppressor gene product, is an early event in lung cancer[J]. Cancer Lett, 2003,202(1):71.

  [3]     Fearon ER, Vogelstein BA.Genetic model for colorectal tumourigenesis[J].Cell,1990,61:759.

  [4]     Ahn SH,Sawada H,Ro JY,et al. Differential expression of annexin Ⅰin human mammary ductal epithelial cells in normal and benign and malignant breast tissues[J].Clin Exp Metastasis, 1997,15(2):151.

  [5]     Madaki T,Tokuda M,Ohnishi M,et al.Enhanced expression of the protein kinase substrate annexin in human hepatocellular carcinoma[J].Hepatology,1996,24(1):72.

  [6]     Xia SH,Hu LP,HuH,et al. Three isoforms of annexinⅠare preferentially expressed in normal esophageal epithelia but down-regulated in esophageal squamous  cell  carcinomas [J].Oncogene,2002,21(43):6641.

  [7]     Paweletz CP,Ornstein DK,Roth MJ,et al.Loss of annexinⅠcorrelates with early onset of tumorigenesis in esophageal and prostate carcinoma[J].Cancer Res,2000,60 (22):6293.

  [8]     Roninson IB,Ocogenic functions of tumour suppressor p21(Waf1/Cip1/Sdi1):associa  tion with cell senescence and tumour-promoting activities of stromal fibroblasts[J].Cancer Lett,2002,179(1):1.


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